viernes, 19 de junio de 2009

Practica: 9 prueba de aglutinación en sangre

C.B.T.i.s 155



Nombre:
José Alberto Huitron Barajas

Profesor:
Doc. Víctor Manuel Alfaro L.

Grupo:
2LM

Practica:
9 prueba de aglutinación en sangre

Fechas:
08/06/09

Índice.
Portada…………………....…...1
Objetivo e introducción……….2
Índice………………………….3
Desarrollo…………………….4
Conclusión……………………5

Objetivo.
Conocer el tipo de sangre y saber si esta sana la persona.

Introducción.
Colocamos 3 gotas en la placa escavada y luego le pusimos 1 gota de diferentes reactivos para ver en cual reaccionaba

Desarrollo.

HORA ACTIVIDAD
9:10 a 9:10 Colocamos 3 gotas de sangre en una placa escavada.
9:10 a 9:15 Se le puso 1 gota de reactivo distinto a cada gota de sangre.
9:15 a 9:20 Observamos lo que paso.
9:20 a 9:25 Nos explicaron los tipos de sangre que hay y como saber que tipo de sangre era la de nuestros compañeros.
9:25 a 9:30 No hicimos nada.
9:30 a 9:40 Intentamos observar en el microscopio.
9:40 a 9:50 Guardamos el material.
9:50 a 10:00 Nos dijeron algunas cosas y nos retiramos.
.
Conclusión.
Que saber que tipo de sangre es nuestro paciente no es difícil.

jueves, 18 de junio de 2009

Practica: 8 prueba de aglutinación en suero sanguíneo

C.B.T.i.s 155



Nombre:
José Alberto Huitron Barajas

Profesor:
Doc. Víctor Manuel Alfaro L.

Grupo:
2LM

Practica:
8 prueba de aglutinación en suero sanguíneo

Fechas:
08/06/09

Índice.
Portada…………………....…...1
Objetivo e introducción……….2
Índice………………………….3
Desarrollo…………………….4
Conclusión……………………5

Materiales.
• Palitos de madera.
• Microscopio.
• Torundas de algodón seco.
• Torundas de algodón alcoholizadas.
• Torniquete.
• Placa escavada.
• Centrifuga.
• Reactivo de ferbiclean.
• Tubos de ensaye.
• Pipeta Pasteur.
• Ovulo.

Objetivo.
Verificar que el suero de la sangre no tenga ninguna anormalidad.

Introducción.
Sacamos sangre a 2 compañeros utilizamos la centrifuga y separamos el plasma entonces colocamos 12 gotas en la placa.

Desarrollo.

HORA ACTIVIDAD
8:00 a 8:05 Nos pusimos el equipo de bioseguridad.
8:05 a 8:15 Recibimos instrucciones.
8:15 a 8:20 Pedimos el material.
8:20 a 8:30 Nos enseñaron a como sacar sangre.
8:30 a 8:35 Anotamos y pusimos la sangre en la gradilla separando 4ml en un tubo de ensaye de tapón rojo en otro de tapón morado.
8:35 a 8:40 Pusimos la sangre en la centrifuga por 5 min.
8:40 a 8:45 Separamos el plasma de la sangre.
8:45 a 8:50 Pusimos 12 gotas en la placa escavada y le pusimos1 gota de diferentes reactivos y lo revolvimos con palitos de madera.
8:50 a 8:52 Observamos.
8:52 a 9:00 Intentamos ver en el microscopio.

Conclusión.

Hay que se cuidadosos.

miércoles, 17 de junio de 2009

Practica: 7 Observación microscópica.

C.B.T.i.s 155



Nombre:
José Alberto Huitron Barajas

Profesor:
Doc. Víctor Manuel Alfaro L.

Grupo:
2LM

Practica:
7 Observación microscópica.

Fechas:
04/06/09

Índice.
Portada…………………....…...1
Objetivo e introducción……….2
Índice………………………….3
Desarrollo…………………….4
Conclusión……………………5

Objetivo.
Encontrar formas esféricas y bacilos.

Introducción.
Se mostrara el proceso que se siguió para encontrar el objetivo.

Desarrollo.

HORA ACTIVIDAD
10:50 a 11:00 Preparamos los microscopios.
11:00 a 11:05 Pusimos 1 gota de aceite de inmersión en el frotis.
11:05 a 11:40 Cada uno de la mesa coloco su porta objetos en el microscopio para empezar a buscar las formas.
11:40 a 11:50 Recogimos el material y lo limpiamos.

Conclusión.
Encontrar el objetivo en el microscopio no es tan fácil se necesita de practica y habilidad.

martes, 16 de junio de 2009

Practica: 6 Tinción de Gram.

C.B.T.i.s 155



Nombre:
José Alberto Huitron Barajas

Profesor:
Doc. Víctor Manuel Alfaro L.

Grupo:
2LM

Practica:
6 Tinción de Gram.

Fechas:
04/06/09

Índice.
Portada…………………....…...1
Objetivo e introducción……….2
Índice………………………….3
Desarrollo…………………….4
Conclusión……………………5

Materiales.

• Cajas de petri elaboradas.
• Porta objetos.
• Papel secante.
• 3 torundas de algodón seco.
• Aceite de inmersión.
• 2 mecheros de bunsen.
• Papel para cubrir mesa.
• Caja de copli.

Objetivo.
Aprender los pasos para realizar la tinción de gram y realizarlos efectivamente.

Introducción.
Aquí se verán los pasos que se hacen para la tinción de gram.

Desarrollo.

HORA ACTIVIDAD
10:00 a 10:10 Nos colocamos el equipo de bioseguridad.
10:10 a 10:30 Se nos dieron indicaciones de que y como teníamos que realizar la practica.
10:30 a 10:40 Acomodamos el material.
10:40 a 10:41 Colocamos el porta objetos en cristal violeta.
10:41 a 10:42 Lavamos con solución yodada (lugol) y cubrimos el frotis con lugol.
10:42 a 10:43 Escurrimos y descoloramos con alcohol asta que no arrastrara más cristal violeta.
10:43 a 10:44 Lavamos con agua para contrastar con la solución de fucsiona.
10:44 a 10:50 Lavamos con agua y secamos con aire.

Conclusión.
Que la practica es fácil si estudias.

lunes, 15 de junio de 2009

Practica: 5 Frotis

C.B.T.i.s 155



Nombre:
José Alberto Huitron Barajas

Profesor:
Doc. Víctor Manuel Alfaro L.

Grupo:
2LM

Practica:
5 Frotis

Fechas:
03/06/09

Índice.
Portada…………………....…...1
Objetivo e introducción……….2
Índice………………………….3
Desarrollo…………………….4
Conclusión……………………5

Materiales.
• 2 mecheros de bunsen.
• 9 asas bacteorologicas
• 1 vaso de precipitado con 25 ml de agua destilada.
• 8 cajas petri ya sembradas.
• 9 porta objetos.

Desarrollo

HORA ACTIVIDAD
9:00 a 9:10 Nos pusimos el equipo de bioseguridad.
9:10 a 9:20 Se nos dieron los materiales.
9:20 a 9:30 Pedimos los materiales.
9:30 a 9:35 Esterilizamos el asa la metimos al agua y luego frotamos en el porta objetos.
9:35 a 9:40 Abrimos la ja petri y esterilizamos de nuevo el asa la metimos en agua y frotamos en la siembra, después frotamos en el porta objetos.
9:40 a 9:45 Frotamos la siembra en el porta objetos asta que quedara casi transparente.
9:45 a 9:50 Esterilizamos el asa y el porta objetos.
9:50 a 9:55 Recogimos y guardamos el material.
9:55 a 10:00 Nos quitamos el equipo de bioseguridad.

Conclusión.

El frotis no tiene que quedar grueso si no se tiene que volver a realizar.

domingo, 14 de junio de 2009

Practica: 4 Observación microscópica

C.B.T.i.s 155



Nombre:
José Alberto Huitron Barajas

Profesor:
Doc. Víctor Manuel Alfaro L.

Grupo:
2LM

Practica:
4 Observación microscópica

Fechas:
01/06/09

Índice.
Portada…………………....…...1
Objetivo e introducción……….2
Índice………………………….3
Desarrollo…………………….4
Conclusión……………………5

Materiales.

• Pie de rey
• Papel secante
• 2 Mecheros de bunsen
• Papel para cubrir mesa
• Cajas petri elaboradas

Objetivo.
Saber describir los cambios que a tenido nuestras siembras.

Introducción.
En la práctica solo observamos y describimos los cambios que tuvieron las cajas petri.

Desarrollo.

HORA ACTIVIDAD
8:00 a 8:10 Perdimos tiempo esperando al otro grupo a que saliera.
8:10 a 8:15 Nos pusimos el equipo de bioseguridad.
8:15 a 8:25 Pedimos el material y se abrió la válvula de gas.
8:25 a 8:30 Se nos dieron las cajas petri ya sembradas.
8:30 a 8:35 Se nos dieron indicaciones.
8:35 a 8:40 Abrimos y colocamos las cajas petri en el centro ya con los mecheros encendidos.
8:40 a 9:40 Estuvimos viendo los cambios que surgieron en la siembra lo que es olor, color y apariencia, los anotamos en el borrador.
9:40 a 9:50 Guardamos las cajas petri y recogimos el material.
9:50 a 9:55 Nos quitamos el equipo de bioseguridad.
9:55 a 10:00 Nos retiramos.

Conclusión.

Que debemos aprender a describir explícitamente.

sábado, 13 de junio de 2009

Practica: 3 Siembra de cajas petri.

C.B.T.i.s 155



Nombre:
José Alberto Huitron Barajas

Profesor:
Doc. Víctor Manuel Alfaro L.

Grupo:
2LM

Practica:
3 Siembra de cajas petri.

Fechas:
28/05/09

Índice.
Portada…………………....…...1
Objetivo e introducción……….2
Índice………………………….3
Desarrollo…………………….4
Conclusión……………………5

Materiales.

• Cajas petri con medio de cultivo.
• Muestras de deshechos como saliva, espacio interdental, raspado de piel, orina, agua fresca y sangre.
• Haza
• Mecheros
• Vaso de precipitado con 250 ml de agua destilada.
• Papel para cubrir mesa
• Papel secante.
• Torundas de algodón
• Tape

Desarrollo.

HORA ACTIVIDAD
7:00 a 7:10 Nos pusimos el equipo de bioseguridad.
7:10 a 7:20 Pedimos el material para realizar la práctica.
7:20 a 7:25 Acomodamos el material que utilizaríamos.
7:25 a 7:35 El profesor y una profesora tomaron muestra de sangre por mesa.
7:35 a 7:40 Se tomo la muestra de raspado de piel.
7:40 a 7:45 Nos dieron los medios de cultivo.
7:45 a 7:50 Colocamos la sangre en la centrifuga por 5 min. A 1500rev*seg.
7:50 a 8:05 Colocamos la orina 15min. A1500rev.*seg.
8:05 a 8:40 Realizamos los diferentes tipos de siembra con las diferentes tipos de muestras.
8:40 a 8:45 Acomodamos las cajas petri poniendo nombre y tipo de siembra.
8:45 a 8:50 Guardamos el material.
8:50 a 8:55 Recibimos indicaciones y regaños.
8:55 a 9:00 Nos quitamos el equipo de bioseguridad y 2 de cada mesa se quedaron a realizar otra actividad.


Conclusión.

Que hay varios tipos de siembra y que es importante que sepamos como se reliza cada una.

viernes, 12 de junio de 2009

Practica: 2 Técnica de esterilización


C.B.T.i.s 155



Nombre:
José Alberto Huitron Barajas

Profesor:
Doc. Víctor Manuel Alfaro L.

Grupo:
2LM

Practica:
2 Técnica de esterilización

Fechas:
25/05/09

Índice.
Portada…………………....…...1
Objetivo e introducción……….2
Índice………………………….3
Desarrollo…………………….4
Conclusión……………………5

Objetivo.
Aprender a utilizar la autoclave de manera adecuada.

Introducción.
Se metió la siembra en el autoclave de manera cuidadosa.

Desarrollo.

HORA ACTIVIDAD
8:50 a 9:00 Se dejo enfriar y luego se tapo con algodón para luego ser sellado con tape poniendo el número de mesa.
9:00 a 9:36 Se coloco la siembra en el auto clave y se dejo un tiempo de 35 min.
9:36 a 9:40 Después de haberse retirado la siembra de la autoclave se puso en medio de los mecheros para tener un campo de esterilización por radiación.
9:40 a 9:50 Se hizo el vaciado en las cajas petri con un baso de precipitado de 250 ml. con la boquilla ya esterilizada
9:50 a 10:10 Se cerro pero no en su totalidad, ya estando solidificada se aseguro con tape para etiquetar los datos de nombre del medio de cultivo, fecha, mesa y hora.
Y por ultimo se puso en la estufa para incubación a 37grados durante 24,48 y 72 hrs.


Conclusión.
Es importante hacerlo correctamente ya que si no se hace de esta manera se tiene que realizar todo de nuevo.

jueves, 11 de junio de 2009

Medio de cultivo

C.B.T.i.s 155

Nombre:
José Alberto Huitron Barajas

Profesor:
Doc. Víctor Manuel Alfaro L.

Grupo:
2LM

Practica:
Medio de cultivo

Fechas:
25/05/09

Índice.
Portada…………………....…1
Objetivo e introducción……...2
Índice………………………...3
Desarrollo……………………4
Conclusión…………………..5

Materiales

• Matraza de Helen Meyer
• Baso de precipitado de 250 y 50ml.
• Varilla de cristal.
• Vidrio reloj.
• Caja petri.
• Espátula.
• Balanza granataria.
• Tape café.
• Embudo de cristal.
• Tolondras de algodón.
• Papel secante.
• Medio de cultivo 450 gr.
• Agua destilada.

Objetivo:
En esta primera práctica es aprender a realizar un medio de cultivo según las indicaciones.
Introducción:
En la práctica se peso el medio de cultivo para ser preparado con agua diluida para después esterilizarlo y meterlo al autoclave.

Desarrollo

HORA ACTIVIDAD
8:00 a 8:05 Nos pusimos el equipo de bioseguridad.
8:05 a 8:15 Recibimos instrucciones.
8:15 a 8:25 Pedimos el material.
8:25 a 8:30 Acomodamos el material.
8:30 a 8:35 Pesamos en la balanza.
8:35 a 8:40 Colocamos el medio de cultivo en un matraz que y tenia
250 ml de agua destilada.
8:40 a 8:45 Lo revolvimos bien y luego lo dejamos reposar de 1 a 2 min.
8:45 a 8:50 Empezamos el proceso de ebullición con los mecheros.
8:50 a 9:00 Se dejo enfriar y luego se tapo con algodón para luego ser sellado con tape.


Conclusión.

Que un medio de cultivo se debe elaborar cuidadosamente por que si se comete un error se debe realizar de nuevo.